Phân Tích Protein Tốc Độ Cao Sử Dụng Phương Pháp Khối Phổ

Chuyên khảo phân tích Fulltext01 3, đánh giá các khía cạnh quan trọng, đề xuất hướng nghiên cứu tiếp theo., phục vụ nghiên cứu và ứng dụng thực tiễn

Trường đại học

KTH Royal Institute of Technology

Chuyên ngành

Biotechnology

Người đăng

Ẩn danh

Thể loại

thesis

2014

135
1
0

Phí lưu trữ

35 Point

Mục lục chi tiết

Abstract

Sammanfattning

List of publications

Published work not included in the thesis

Contributions to the included papers

Abbreviations

Preface

Contents

1. Proteins and proteomics

1.1. What are proteins and why should we study them?

1.2. The challenges of proteomics

1.3. The proteome - complex but informative

2. Mass spectrometry-based proteomics

2.1. History of mass spectrometry

2.2. Mass spectrometry for protein analysis

2.3. Sample preparation for mass spectrometry

2.4. Data independent acquisition methods

2.5. Proteome coverage and sensitivity

3. Affinity proteomics

3.1. History of the immunoassay

3.2. Antibodies as affinity reagents

3.3. Alternative affinity reagents

3.4. The Human Protein Atlas

3.5. Cross-reactivity in immunoassays

4. Bridging affinity proteomics with mass spectrometry

4.1. Benefits of combining immunoenrichment with mass spectrometry

4.2. Immunoenrichment of protein or peptide groups

5. Miniaturization

5.1. Miniaturization in proteomics

5.2. The ISET platform

6. Present Investigation

6.1. Summary

6.2. Development of screening methods for recombinant protein production (papers I and II)

6.3. Absolute MS-based protein quantification to study the correlation between protein and mRNA levels (paper III)

6.4. Antibody validation using immunoenrichment coupled to mass spectrometry (paper IV)

6.5. Protein quantification using immunoenrichment and mass spectrometry (paper V)

Populärvetenskaplig sammanfattning

Acknowledgements

Bibliography

Tóm tắt

I. Tổng Quan Về Phân Tích Protein Tốc Độ Cao Bằng Phương Pháp Khối Phổ

Phân tích protein là một lĩnh vực quan trọng trong sinh học phân tử, giúp xác định và định lượng protein trong các mẫu sinh học. Phương pháp khối phổ (mass spectrometry) đã trở thành công cụ chủ chốt trong việc phân tích protein với tốc độ cao. Phương pháp này cho phép phân tích hàng triệu protein cùng lúc, cung cấp thông tin quý giá về chức năng và vai trò của chúng trong các quá trình sinh học và bệnh lý.

1.1. Khái Niệm Cơ Bản Về Phân Tích Protein

Phân tích protein liên quan đến việc xác định cấu trúc và chức năng của protein. Các phương pháp như khối phổ giúp phát hiện và định lượng protein trong các mẫu phức tạp, từ đó cung cấp cái nhìn sâu sắc về vai trò của chúng trong sinh học.

1.2. Tại Sao Phân Tích Protein Quan Trọng

Phân tích protein giúp hiểu rõ hơn về các bệnh lý, từ đó phát triển các phương pháp điều trị hiệu quả. Việc xác định protein có thể cung cấp thông tin về sự phát triển của bệnh và các cơ chế sinh học liên quan.

II. Những Thách Thức Trong Phân Tích Protein Tốc Độ Cao

Mặc dù phương pháp khối phổ mang lại nhiều lợi ích, nhưng vẫn tồn tại nhiều thách thức trong việc phân tích protein tốc độ cao. Các vấn đề như độ nhạy, độ chính xác và khả năng tái lập kết quả là những yếu tố cần được xem xét kỹ lưỡng.

2.1. Độ Nhạy và Độ Chính Xác Trong Phân Tích

Độ nhạy của phương pháp khối phổ có thể bị ảnh hưởng bởi nhiều yếu tố, bao gồm chất lượng mẫu và điều kiện phân tích. Độ chính xác cũng là một yếu tố quan trọng, ảnh hưởng đến kết quả cuối cùng của phân tích protein.

2.2. Khó Khăn Trong Việc Phân Tích Mẫu Phức Tạp

Mẫu sinh học thường chứa nhiều loại protein khác nhau, điều này làm cho việc phân tích trở nên phức tạp. Cần có các phương pháp tiền xử lý mẫu hiệu quả để tách biệt và làm sạch protein trước khi phân tích.

III. Phương Pháp Khối Phổ Trong Phân Tích Protein Tốc Độ Cao

Phương pháp khối phổ đã được cải tiến đáng kể trong những năm gần đây, cho phép phân tích protein với tốc độ và độ chính xác cao hơn. Các kỹ thuật như MALDI-TOF và ESI-MS đã trở thành tiêu chuẩn trong lĩnh vực này.

3.1. Kỹ Thuật MALDI TOF Trong Phân Tích Protein

MALDI-TOF (Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Time-of-Flight) là một kỹ thuật phổ biến trong phân tích protein. Kỹ thuật này cho phép xác định khối lượng protein một cách nhanh chóng và hiệu quả.

3.2. Kỹ Thuật ESI MS Trong Phân Tích Protein

ESI-MS (Electrospray Ionization Mass Spectrometry) là một phương pháp khác được sử dụng rộng rãi. Kỹ thuật này cho phép phân tích các protein lớn và phức tạp, cung cấp thông tin chi tiết về cấu trúc và chức năng của chúng.

IV. Ứng Dụng Thực Tiễn Của Phân Tích Protein Bằng Khối Phổ

Phân tích protein bằng phương pháp khối phổ đã được áp dụng rộng rãi trong nhiều lĩnh vực, từ nghiên cứu cơ bản đến ứng dụng lâm sàng. Các nghiên cứu đã chỉ ra rằng phương pháp này có thể giúp phát hiện biomarker cho nhiều loại bệnh.

4.1. Phát Hiện Biomarker Trong Y Học

Phân tích protein có thể giúp xác định biomarker cho các bệnh như ung thư, từ đó hỗ trợ trong việc chẩn đoán và điều trị. Nghiên cứu đã chỉ ra rằng nhiều protein có thể là chỉ số cho sự phát triển của bệnh.

4.2. Ứng Dụng Trong Nghiên Cứu Sinh Học

Trong nghiên cứu sinh học, phân tích protein giúp hiểu rõ hơn về các quá trình sinh học cơ bản. Việc xác định và định lượng protein có thể cung cấp thông tin về chức năng của chúng trong tế bào.

V. Kết Luận Về Tương Lai Của Phân Tích Protein Tốc Độ Cao

Tương lai của phân tích protein bằng phương pháp khối phổ hứa hẹn sẽ mang lại nhiều tiến bộ mới. Các công nghệ mới và cải tiến trong phương pháp phân tích sẽ tiếp tục mở rộng khả năng nghiên cứu và ứng dụng trong lĩnh vực sinh học.

5.1. Xu Hướng Mới Trong Công Nghệ Phân Tích

Công nghệ phân tích protein đang phát triển nhanh chóng với sự ra đời của các thiết bị mới và phần mềm phân tích. Những tiến bộ này sẽ giúp cải thiện độ nhạy và độ chính xác của các phương pháp phân tích.

5.2. Tương Lai Của Nghiên Cứu Protein

Nghiên cứu protein sẽ tiếp tục đóng vai trò quan trọng trong việc hiểu biết về bệnh lý và phát triển các phương pháp điều trị mới. Sự kết hợp giữa công nghệ sinh học và phân tích protein sẽ mở ra nhiều cơ hội mới trong nghiên cứu.

22/07/2025

Trích đoạn nội dung tài liệu

High-throughput protein analysis using mass spectrometry-based methods Tove Boström KTH Royal Institute of Technology School of Biotechnology Stockholm 2014 c Tove Boström 2014 KTH Royal Institute of Technology School of Biotechnology Division of Protein Technology AlbaNova University center SE-106 91 Stockholm Sweden Paper I c 2011 Wiley-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA, Weinheim Paper II c 2012 American Chemical Society Paper IV c 2014 American Chemical Society Paper V c 2014 The American Society for Biochemistry and Molecular Biology, Inc. ISBN 978-91-7595-292-5 TRITA-BIO Report 2014:15 ISSN 1654-2312 Printed by Universitetsservice US-AB 2014 "If you can dream it, you can do it." - Walt Disney Abstract In the field of proteomics, proteins are analyzed and quantified in high numbers. Protein analysis is of great importance and can for example generate information regarding protein function and involvement in disease.

Different strategies for protein analysis and quan- tification have emerged, suitable for different applications. The focus of this thesis lies on protein identification and quantification using different setups and method development has a central role in all included papers. The presented research can be divided into three parts. Part one describes the develop- ment of two different screening methods for His6-tagged recombinant protein fragments.

In the first investigation, proteins were purified using immobilized metal ion affinity chro- matography in a 96-well plate format and in the second investigation this was downscaled to nanoliter-scale using the miniaturized sample preparation platform, integrated selective enrichment target (ISET). The aim of these investigations was to develop methods that could work as an initial screening step in high-throughput protein production projects, such as the Human Protein Atlas (HPA) project, for more efficient protein production and purification. In the second part of the thesis, focus lies on quantitative proteomics. Protein fragments were produced with incorporated heavy isotope-labeled amino acids and used as internal standards in absolute protein quantification mass spectrometry experiments.

The aim of this investigation was to compare the protein levels obtained using quanti- tative mass spectrometry to mRNA levels obtained by RNA sequencing. Expression of 32 different proteins was studied in six different cell lines and a clear correlation between protein and mRNA levels was observed when analyzing genes on an individual level. The third part of the thesis involves the antibodies generated within the HPA project. In the first investigation a method for validation of antibodies using protein immunoenrichment coupled to mass spectrometry was described.

In a second study, a method was developed where antibodies were used to capture tryptic peptides from a digested cell lysate with spiked in heavy isotope-labeled protein fragments, enabling quantification of 20 proteins in a multiplex format. Taken together, the presented research has expanded the pro- teomics toolbox in terms of available methods for protein analysis and quantification in a high-throughput format. Keywords: Proteomics, mass spectrometry, affinity proteomics, immunoenrichment, immunoprecipitation, IMAC, screening, protein production, protein purification, ISET, quantification, SILAC, stable isotope standard, antibody validation I Sammanfattning I det forskningsområde som kallas proteomik studeras proteiner i stor skala, det vill säga många proteiner parallellt. Genom att studera proteiner kan man till exempel få informa- tion om proteiners funktion och huruvida ett protein är involverat i en sjukdomsprocess.

I denna avhandling har proteiner analyserats och kvantifierats på olika sätt och i alla inkluderade artiklar har metodutveckling haft en central roll. Forskningen som presenteras i denna avhandling kan delas in i tre delar. Den första delen beskriver två nya screeningmetoder för His6 -taggade rekombinanta proteinfragment. I ett första projekt renades proteinerna med immobiliserad metalljonsaffinitetskromatografi i ett 96-brunnsformat och i ett andra projekt skalades detta ner till nanoliter-format genom att använda provberedningsplattformen ISET.

Målet med dessa projekt var att utveckla metoder som skulle kunna användas som ett initialt screeningsteg vid storskalig protein- produktion för att öka effektiviteten. I del två ligger fokus på kvantifiering av proteiner. Proteinfragment producerades med aminosyror med inkorporerade tunga isotoper och an- vändes sedan som interna standarder i absolut kvantifiering med masspektrometri. Målet var här att jämföra proteinnivåer med motsvarande mRNA-nivåer, vilka bestämts med RNA-sekvensering.

Koncentrationen av 32 proteiner bestämdes i sex olika cellinjer och det fanns en tydlig korrelation mellan protein och mRNA när generna studerades indi- viduellt. I den sista delen av avhandlingen användes antikroppar som tagits fram inom proteinatlas-projektet (HPA). I ett projekt utvecklades en metod för validering av an- tikroppar genom att först använda antikropparna för anrikning av målproteinerna från ett cellysat och sedan med masspektrometri bestämma proteinernas identitet. I ett andra projekt användes antikropparna istället för att fånga ut peptider från ett trypsinklyvt cellysat.

I en setup där tunga isotopinmärkta proteinfragment adderades till lysatet före klyvning kunde 20 proteiner kvantifieras parallellt. Sammantaget har de presenterade projekten bidragit till att möjligheterna för parallell proteinanalys och kvantifiering har ökat. II List of publications This thesis is based on the five publications listed below. The publications are referred to by Roman numbers (I-V) and are included in the Appendix of the thesis.

Parallel production and verification of protein products us- ing a novel high-throughput method. 1018-25 Paper II Adler B. and Lau- rell T. Miniaturized and automated high-throughput veri- fication of proteins in the ISET platform with MALDI MS.

Anal Chem (2012) vol. 8663-9 Paper III Boström T. Investigating the correlation of protein and mRNA levels in human cell lines using quantitative proteomics and transcriptomics. Submitted Paper IV Boström T.

Investigating the applicability of antibodies gen- erated within the Human Protein Atlas as capture agents in immunoenrichment coupled to mass spectrometry. J Proteome Res (2014) vol. Immuno-proteomics using polyclonal anti- bodies and stable isotope labeled affinity-purified recom- binant proteins. Mol Cell Proteomics (2014) vol.

1611-24 *Both authors contributed equally to the work. III Published work not included in the thesis Boström T. Purification systems based on bacterial surface proteins.), (2012) ISBN: 978-953-307-831-1, InTech *Both authors contributed equally to the work. IV Contributions to the included papers Paper I Performed all experimental work and data analysis to- gether with coauthor.

Wrote the manuscript together with coauthors. Paper II Performed all experimental work together with coauthor. Wrote the manuscript together with coauthors. Paper III Performed all experimental work except cell cultivation and performed all MS data analysis.

Wrote the manuscript together with coauthors. Paper IV Performed all experimental work and all MS data analysis. Wrote the manuscript together with coauthors. Paper V Performed cell cultivation, MS sample preparation and all MS data analysis.

Produced and quantified all heavy isotope-labeled PrESTs. Contributed to the writing of the manuscript. V Abbreviations 2D-GE two-dimensional gel electrophoresis Ab antibody ABD albumin binding domain ABP albumin binding protein ACM antibody colocalization microarray APEX absolute protein expression AQUA absolute quantification AUC area under curve BAC bacterial artificial chromosome BCA bicinchoninic acid cAb capture antibody CDR complementary determining region CIMS context-independent motif specific CR cross reactivity dAb detection antibody DARPin designed ankyrin repeat protein DNA deoxyribonucleic acid DWP deep well plate EGTA ethylene glycol tetraacetic acid EIA enzyme immunoassay ELISA enzyme-linked immunosorbent assay emPAI exponentially modified protein abundance index ESI electrospray ionization EtEP equimolarity through equalizer peptide Fab fragment antigen binding FASP filter-aided sample preparation Fc fragment crystallizable FT-ICR fourier transform ion cyclotron resonance GFP green fluorescent protein GPS global proteome survey His6 hexahistidine HPA human protein atlas IBAQ intensity-based absolute quantification ICAT isotope coded affinity tag IEF isoelectric focusing Ig immunoglobulin IMAC immobilized metal ion affinity chromatography iMALDI immuno-MALDI IRMA immunoradiometric assay ISET integrated selective enrichment target iTRAQ isobaric tags for relative and absolute quantification VI LC liquid chromatography LFQ label free quantification mAb monoclonal antibody MALDI matrix-assisted laser desorption ionization MRM multiple reaction monitoring mRNA messenger ribonucleic acid MS mass spectrometry MSIA mass spectrometric immunoassay MS/MS tandem mass spectrometry m/z mass over charge pAb polyclonal antibody PCR polymerase chain reaction PEA proximity elongation assay PFL protein frequency library pI isoelectric point PLA proximity ligation assay PMF peptide mass fingerprint PrEST protein epitope signature tag PSAQ protein standard absolute quantification PSM peptide spectrum match PTM post-translational modification QconCAT quantification concatamer QUICK quantitative immunoprecipitation combined with knockdown RIA radioimmunoassay RNA ribonucleic acid scfv single-chain fragment variable SDS-PAGE sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis SILAC stable isotope labeling by/with amino acids in cell culture SISCAPA stable isotope standards and capture by anti-peptide antibodies SMAC sequential multiplex analyte capturing SRM selected reaction monitoring TAP tandem affinity purification TEV tobacco etch virus TMT tandem mass tag TOF time of flight TXP Triple X Proteomics µTAS micro total analysis system WB western blot VII Preface When I started my journey as a PhD student in 2010, I was convinced that I would find a cure for cancer. Well, maybe not a cure, but at least that I would on my dissertation day have been part of the development of a fab- ulous diagnostic platform that would revolutionize the medical field.

Five years seemed like such a long time - just think of all the things I could ac- complish! I soon realized however, that I might have overestimated things slightly. I came to the understanding that when doing research, five years is actually quite a short period. My enthusiasm was slowly replaced with dis- couragement and I started wondering if I would manage to achieve anything at all. Eventually, things started to turn and I could experience the joy of one good result that was easily enough to outweigh a dozen bad ones.

Today I know that every little step towards a cure for cancer, or any other goal one may have, is of great importance and truly makes a difference. Therefore I feel extremely happy and proud that I have made a contribution to the field of proteomics through this thesis. The new findings that are presented in this book are mainly the development of novel tools to study proteins in different ways. By taking advantage of the large resource of both antibodies and antigens available within the Human Protein Atlas project, methods for protein identification, quantification and antibody validation have been developed.

Present investigations are sum- marized in chapter 6. In order for the reader to get a better picture of the research as well as its impact on science, an overview of the field is presented in chapters 1-5. Many people have contributed to the research presented in this thesis and to you I am most grateful. Tove Boström Stockholm, August 25th 2014 VIII Contents Abstract.

II List of publications. III Contributions to the included papers. VIII 1 Proteins and proteomics 1 What are proteins and why should we study them?. 1 The challenges of proteomics.

4 The proteome - complex but informative. 6 2 Mass spectrometry-based proteomics 9 History of mass spectrometry. 9 Mass spectrometry for protein analysis. 10 Sample preparation for mass spectrometry.

15 Data independent acquisition methods. 19 Proteome coverage and sensitivity. 29 3 Affinity proteomics 33 History of the immunoassay. 33 Antibodies as affinity reagents.

34 Alternative affinity reagents. 37 The Human Protein Atlas. 42 Cross-reactivity in immunoassays. 46 IX CONTENTS 4 Bridging affinity proteomics with mass spectrometry 49 Benefits of combining immunoenrichment with mass spectrom- etry.

50 Immunoenrichment of protein or peptide groups. 58 5 Miniaturization 61 Miniaturization in proteomics. 61 The ISET platform. 64 6 Present Investigation 67 Summary.

67 Development of screening methods for recombinant protein production (papers I and II). 68 Absolute MS-based protein quantification to study the corre- lation between protein and mRNA levels (paper III). 75 Antibody validation using immunoenrichment coupled to mass spectrometry (paper IV). 79 Protein quantification using immunoenrichment and mass spec- trometry (paper V).

88 7 Populärvetenskaplig sammanfattning 91 8 Acknowledgements 93 9 Bibliography 97 X Chapter 1 Proteins and proteomics What are proteins and why should we study them? Proteins are everything and they are everywhere. In almost all biochemical processes, you will find that proteins are among the key players. As Francis Crick pointed out in 1958: "The most significant thing about proteins is that they can do almost anything" [1].

Nội dung được bảo vệ bản quyền — Tải xuống đầy đủ